專利名稱：具有免疫刺激劑活性的植物提取物的制作方法
技術領域：
本發明涉及具有免疫刺激劑活性的植物提取物。
背景技術：
已通過如下程序生產了生物活性的多糖，即搗碎馬鈴薯球莖的芽、用沸水進行提取、在20℃維持16-18小時、分離提取物、放置不少于20日、根據分子量進行分級分離和提取具有超過10000道爾頓分子量的物質，隨后進行濃縮和干燥(RU 2108800 C1，A61K 35/78，20.04.1998)。在該途徑中產生的物質具有抗病毒和抗細菌活性。
已通過如下程序生產了具有免疫刺激活性的多糖，即用含水的甲醛處理植物材料、置于含水的酸中、用含水的草酸銨提取果膠多糖并凍干。將新鮮的水生有花植物如浮萍屬(Lemna spp)雜草的任何物種和高等植物如Oberna behen(L)精細剪切的“水面上”部分用作原材料(RU2149642 C1，A61K 35/78，27.05.2000)。
L.A.Chekanovskaya和A.V.Generalov公開了來自馬鈴薯Solanumtuberosum芽的提取物和生物活性制劑“γ-植物”特征，參見Chem.Pharm Journal(2000) 34(3)51-56。其生產包括搗碎原材料、用沸水進行提取、對水相提取物進行離心、用丙酮進行濃縮和沉淀、精制和干燥終產物。精制是常規的，且包含透析、在AcA44上的凝膠過濾、離子交換層析和在最終階段的HPLC。用該方法產生的物質是分子量為70kD的糖蛋白，該糖蛋白包含90％的糖類和10％的蛋白質。γ-植物中的糖類部分由70％葡萄糖、3.7％阿拉伯糖、2.08％木糖、6.84％半乳糖、0.58％甘露糖、1％氨基糖(aminosaccharide)和5.1％糖醛酸組成。
發明概述根據本發明，可從薯蕷科、車前科或茄科搗碎的植物原材料中提取具有免疫刺激、抗病毒和抗細菌活性的新物質。具體地，將水相提取物進行離心，然后在氯化鈉存在時用96％的乙醇濃縮和沉淀。將沉淀溶解并再次用鹽或酸進行沉淀，并將這樣獲得的粗酸性肽聚糖用堿或堿金屬鹽的飽和溶液進行處理；將純化的酸性肽聚糖用凝膠層析進行精制，然后進行干燥。
這種依賴于特定操作順序的方法得到了具有強的免疫刺激、抗病毒和抗細菌活性的新物質，且該物質是分子量為1200-40000kD且葡萄糖對糖醛酸的重量比例為1到2-4的水溶性酸性肽聚糖。一種藥物組合物可包含該肽聚糖連同一種或多種藥物可接受的填充物和/或載體。
優選實施方案描述給定的方法優選應用植物的葉、莖、根、球莖和/或芽。可應用植物在其發育到成熟的任何階段的不同部分。
在次級沉降過程中，優選地將溴棕三甲銨和氯化鈣用作鹽。可將有機或無機酸或酸性非有機鹽用作酸性劑。次級沉降使得粗酸性肽聚糖能夠同各種伴隨的多糖和蛋白質相分離。
酸性肽聚糖產物可用如凝膠層析進行純化；TSK HW-75F、瓊脂糖2B或4B CL是適當的層析劑。
新物質的肽部分構成了全部肽聚糖分子質量的13±3％。用牛血清白蛋白作為標準應用勞里方法測量了肽的量(Lowry等人，J.Biol.Chem(1951)193265-275)。獲得了如表1所示的分析(顯示了5種主要的氨基酸)。
表1
分子的多糖部分發現由下面成分組成半乳糖醛酸 18±6％葡萄糖 9±3％半乳糖 5.5±2％甘露糖 0.7±0.25％阿拉伯糖3.8±1.3％鼠李糖 1.9±0.9％酸性糖根據在濃縮硫酸中與3，5-二甲基苯酚的顏色反應確定(Usov等人，Botanica Marina(1995)，3843-51)。應用糖醛酸的氣液層析法(GLC)發現在酸性肽聚糖中半乳糖醛酸主要以3-甲基甲硅烷基衍生物的形式存在(Albersheim，Methods Enzymol.(1987)1183-40)。用多元醇乙酸鹽形式的糖的GLC分析探測中性糖(Ablersheim，同上)。
如在下文中報道的結果所顯示的，本發明的物質具有各種有益的性質。它可用于人或其他哺乳動物或動物疾病的治療(包括預防)，該疾病可由任何增強的抗體合成或活化的巨噬細胞、單核細胞、NK-細胞、粒細胞或細胞因子或干擾素合成來改善。這種疾病是本領域技術人員公知的。
在應用中，該物質一般將制備為包含可接受的載體的藥物組合物。適當的載體(可為液體的)的例子是本領域中眾所周知的，且將根據所需給藥途徑進行選擇。途徑和同樣的劑量可易于由本領域技術人員根據通常的因素進行選擇，該因素如疾病的嚴重性、患者的狀況、其他治療等。對這些因素的指南由下文的實施例提供。
下面的實施例闡明本發明。
實施例1使來自薯蕷科的山藥(dioscorea)(D.cuacasia Lipsky)根部分的植物細胞生長于培養基中。在培養階段結束時，通過過濾分離細胞物質，并將上清液濃縮、用蒸餾水進行透析及冷凍干燥。
將500ml蒸餾水加入到從培養液中產生的5g干燥混合物中。在室溫進行3小時的提取。用離心將不溶的沉淀除去。將上清液濃縮到200ml的體積；將200mg氯化鈉溶解于其中，然后添加600ml 96％的乙醇。通過在4000rpm離心30分鐘提取沉淀。然后將沉淀用50ml 96％的乙醇洗滌、離心并在氣流中干燥。
通過在室溫混合1小時而將如上所述獲得的1g干產物在200ml蒸餾水中稀釋。向該溶液中加入5ml 10％的三氯乙酸溶液。將結果所得的沉淀即酸性粗肽聚糖通過離心進行分離，并用水進行洗滌。然后加入50ml蒸餾水，且在混合的同時，逐滴加入25％的氨溶液直到實現沉淀的完全溶解。
將產生的溶液引入到TSK HW-75F柱中以進行凝膠層析。用水使級分從柱子中洗脫。收集分子量在1200和40000kD之間的第一個高分子量峰。將該級分在旋轉蒸發器中濃縮并凍干。
酸性肽聚糖的產量為39mg。葡萄糖與糖醛酸的重量比例為1∶3。肽含量為11.2％。
實施例2將100g來自薯蕷科的山藥(Q.cuacasia Lipsky)新鮮的莖搗碎。加入500ml蒸餾水，并將搗碎的產物在30-40℃進行5小時的提取。將混合物用機械壓力擠壓，并將水相提取物收集、透析并用蒸發器將其濃縮至100ml體積。向濃縮物中加入100mg氯化鈉，然后也加入300ml 96％的乙醇。通過在4000rpm離心30分鐘提取沉淀。然后將沉淀用30ml 96％的乙醇洗滌、離心并在氣流中干燥。
通過在室溫混合1小時而將上面獲得的1g干燥沉淀在200ml蒸餾水中稀釋。去除不溶性部分并向上清液添加5ml濃縮的HCl。將結果所得的沉淀通過離心進行分離并在水在中進行洗滌。然后加入50ml蒸餾水，且在混合的同時，逐滴加入25％的氨溶液直到實現沉淀的完全溶解。
用水使級分從柱子中洗脫。收集分子量在1200和40000kD之間的第一個高分子量峰。將該級分在蒸發器中濃縮并然后凍干。
酸性肽聚糖的產量為16mg。葡萄糖與糖醛酸的重量比例為1∶2.2。肽含量為14.7％。
實施例3將100g來自車前科(P.major L.)的新鮮收獲的車前草葉在500ml蒸餾水中搗碎，并在30-40℃加熱的同時進行4小時的提取。將混合物用機械壓力擠壓，并將水相提取物收獲、透析并用蒸發器將其濃縮至100ml體積。向濃縮物中加入100mg氯化鈉，然后也加入300ml 96％的乙醇。通過在4000rpm離心30分鐘提取沉淀。然后將沉淀用30ml96％的乙醇洗滌、離心并在氣流中干燥。
通過在室溫混合1小時而將1g干產物在200ml蒸餾水中稀釋。去除不溶性部分并向上清液添加5ml濃縮的HCl。將產生的沉淀通過離心進行分離并在水在中進行洗滌。然后加入50ml蒸餾水，且在混合的同時，逐滴加入25％的氨溶液直到實現沉淀的完全溶解。
將結果所得的溶液引入到TSK HW-75F柱中以進行凝膠層析。用水使級分從柱子中洗脫。收集分子量在1200和40000kD之間的第一個高分子量峰。將該級分在蒸發器中濃縮并然后凍干。
酸性肽聚糖的產量為16mg。葡萄糖與糖醛酸的重量比例為1∶2.7。肽含量為13.8％。
實施例4除應用200ml濃的NH4NO3或(NH4)2SO4溶液代替5ml濃HCl以提取酸性肽聚糖之外，重復實施例3。
終產物產量為14mg。葡萄糖與糖醛酸的質量相關性為1∶2.4。肽含量為15.8％。
實施例5將5kg來自茄科的馬鈴薯(S.tuberosum)芽用10L水搗碎并在室溫于攪拌的同時進行2小時的提取。將混合物用機械壓力擠壓。將水相提取物透析并用10kD中空纖維柱體通過超濾而濃縮至1升。
向濃縮物中加入1g氯化鈉，然后也加入300ml 96％的乙醇。通過在4000rpm離心30分鐘提取沉淀。然后將沉淀用30ml 96％的乙醇洗滌、離心并在氣流中干燥。
在室溫攪拌1小時的同時將10g干產物在1升蒸餾水中稀釋。去除不溶性部分并向上清液添加150ml 5％的氯化鈣。將酸性粗肽聚糖沉淀通過離心進行分離。然后將其于50℃進行攪拌的同時溶解于氯化鈉飽和溶液中，直到聚合物完全溶解。
將結果所得的溶液引入到TSK HW-75F柱中以進行凝膠層析。用水使級分從柱子中洗脫。收集分子量在1200和40000kD之間的第一個高分子量峰。將該級分在蒸發器中濃縮并然后凍干。
酸性肽聚糖的產量為170mg。葡萄糖與糖醛酸的重量比例為1∶4。
實施例6
除應用馬鈴薯球莖及將9％的溴棕三甲銨溶液用作次級沉降中的鹽之外，重復實施例4。酸性肽聚糖的產量為114mg。葡萄糖與糖醛酸的質量相關性為1∶3.5。肽含量為16％。
實施例7將如在實施例3中獲得的21.4mg酸性肽聚糖在0.1M三氟乙酸中于100℃進行2小時的部分水解。將水解過程中形成的沉淀通過離心(13000rpm，2分鐘)獲得，用三氟乙酸和水進行洗滌，然后凍干。沉淀的產量(編碼為L-1)為1.5mg。將去除沉淀后剩余的可溶性物質通過真空蒸發進行干燥，然后溶于乙醇中并進行干燥以去除痕量的三氟乙酸。將剩余物溶于3ml水中，并將不溶性材料通過離心進行沉淀，用水進行洗滌并凍干。
沉淀的產量(L-2)為1.5mg。沉淀L-1和L-2的總產量為酸性肽聚糖起始質量的約14％。人們發現沉淀為脂質。
沉淀的甲醇分解進行如下。將0.8mg L-1和0.9mg L-2樣品分別與1ml無水甲醇混合，然后向每一個上述反應混合物加入0.1ml乙酰氯(冰冷的)。將反應混合物在接合的玻璃安瓿中于100℃加熱4小時，這將導致沉淀的完全溶解。將反應混合物通過真空蒸發進行干燥，然后加入1ml氯仿，并用氣液層析法(GLC)和層析質譜儀(chromatomassspectrometer)進行檢查。
兩個樣品(L-1和L-2)的GLC-光譜相同；每一個光譜具有2個信號。GLC在Carlo Fractovap Series 4200上進行(氣體載體He、注射器溫度280℃、柱-Ultra-1(25m×0.2mm×0.33μm))。
質譜顯示棕櫚酸和硬脂酸的甲基酯以2∶1的比例存在。應用離子型Capture ITD-700(Finnigan MAT、電子命中70EV、質量范圍m/z 39-450、掃描速度1次掃描/秒、保留累積240秒)質譜儀。
實施例8抗體合成的活化本實施例顯示酸性肽聚糖(APG)同時與外源抗原的注射導致對注射的抗原特異性的抗體生產的實質強化。在實驗中，應用小鼠CBA、C57BI/6、(CBA×C57BI/6)F1和BALB/c。將牛血清白蛋白(BSA)、卵清蛋白(EA)和綿羊紅細胞(SE)用作對小鼠進行免疫接種的抗原。
通過離心(1000rpm、10分鐘)將去纖維蛋白的綿羊血液紅細胞在50-倍體積的Hank氏溶液中洗滌，然后重懸于相同的溶液中。通過腹膜內給予2ml SE、200μg BSA或50μg EA而對小鼠進行免疫接種。后兩種抗原注射兩次，在免疫接種之間有2-4星期的間隔。
在使用前2-3小時，將適當量的APG溶于Hank氏溶液或生理鹽水中。將APG以1-1000μg的劑量給予小鼠。當用BSA、EA或SE對小鼠進行免疫接種時，將APG與抗原同時給予。
用SE進行免疫接種的小鼠中免疫反應的強度根據抗體形成細胞(AFC)數目確定，該細胞在脾細胞懸浮液中用Jerne和Nordin(1963)的方法進行探測。AFC在免疫接種后4-5日進行探測。對小鼠血清中EA或BSA特異性的抗體的存在用固相酶免疫測定(EIA)進行探測。對BSA特異性的抗體同種型通過EIA用對小鼠IgM、IgG1、IgG2a、IgG2b或IgG3特異性的次級兔抗體進行確定。
用BSA和APG進行免疫接種后對小鼠血清中BSA特異性的抗體水平(EIA-效價)達到了1∶20000，而對單獨應用BSA免疫接種的反應水平非常低且僅達到了1∶500。如果抗原與APG聯合，那么對BSA的次級免疫反應期限也增加。在該情況中，IgG1、IgG2a和IgG3抗體同種型占優勢。在APG影響下，對BSA特異性的IgM和IgG2b生產以較低的程度增加。佐劑作用主要依賴于APG的劑量。10μg APG的劑量對于增強對SE的原發免疫反應最適，而1μg APG的劑量對于刺激對BSA的次級免疫反應最適。
APG對BaBb/c小鼠中EA-特異性抗體生產的影響由表2中所示的數據證明。脂肽為Pam3Cys-Ser-Lys4，即一種眾所周知的免疫佐劑。
表2
實施例9組織巨噬細胞的活化本實施例顯示從腹膜腔溢泌物中收獲的小鼠組織巨噬細胞可通過在APG存在時的體外培養而強烈活化。該活化可在其形態學(細胞改變了其大小和形狀)以及在其代謝和酶活性中觀察到。
用3ml培養基199對(CBA×C57BI/6)F1小鼠進行腹膜內注射。在注射后5分鐘內收集腹膜溢泌物。將10-15只小鼠的溢泌物收獲入相同的硅滲化離心管中，并于1000rpm旋轉10分鐘。將細胞沉淀重懸，并將其濃度調節到每ml中有2-2.5mln腹膜溢泌物細胞(PEC)。
巨噬細胞的氧化自由基生產將1ml PEC細胞懸浮液傾倒入化學發光圖(chemiluminograph)試管中，并于37℃在氣氛中5％CO2的潤濕空氣中溫育2小時。溫育后，用培養基199將非貼壁的細胞洗掉。然后將1ml含有濃度為每ml中0-50μgAPG的完全培養基(RPMI-1640、10％FCS、2mM L-谷氨酰胺和10μg/ml艮他霉素)在附著試管的貼壁細胞上部傾倒入每一個試管中。然后將試管溫育24小時。溫育后，用0.5ml緩沖溶液(pH7.2)代替培養基，該緩沖溶液從Hank氏溶液(無苯酚紅)制備，補充了5mM葡萄糖、10mM HEPES-緩沖液和0.62mM魯米諾(Sigma Chemical Co.)。
將貼壁的巨噬細胞的氧化自由基生產估計為自發的和酵母多糖(zymozan)-誘導的化學發光水平。3個實驗的結果總和表示為每分鐘每1mln細胞中脈沖的平均數目。在APG存在時貼壁巨噬細胞在24小時內的溫育不影響其自發化學發光的水平，但相當大地增加了(達到50％)細胞對酵母多糖反應而產生氧化代謝物的能力，該酵母多糖是一種是微生物細胞壁成分。巨噬細胞化學發光能力的增加在0.2μg/ml APG時即已經開始，且在5.5μg/ml APG時達到其最大值。劑量依賴性充分與APG濃度相關，這導致由其形態學改變估計的巨噬細胞的最大活化。
巨噬細胞膜上5’-核苷酸酶(5’-NTDase)的活性對5’-NTDase酶水平的探測是估計巨噬細胞活化的高說明性的方法之一。已知在免疫調制劑影響下該酶活性的降低充分與其免疫增強和抗感染功效相關。
為了確定APG對腹膜巨噬細胞5’-NTDase水平的影響，用0.5ml生理鹽水中30μg的APG對(CBA×C57BI/6)F1小鼠進行腹膜內注射。用0.5ml不含APG的生理鹽水對對照小鼠進行注射。注射后24小時，通過用5ml培養基199對每一個小鼠腹膜進行洗滌而收獲腹膜溢泌物細胞。將10ml體積中的PEC懸浮液置于100mm培養皿中，然后于37℃和5％CO2溫育2小時。將非貼壁細胞去除，而用乳膠刮刷從培養皿表面收集貼壁細胞，然后將PEC的濃度調節到50μl體積中2mln細胞。將該體積的懸浮液置于96-孔微量滴定板上的孔中，然后加入5’-腺甘單磷酸作為5’-NTDase的底物，并將細胞在上述條件下溫育60分鐘。根據鉬試劑的色彩強度用光度測定法(λ620nm)測量酶活性，該鉬試劑是在溫育后置于所有孔中的。結果表示為每1mln PEC的光密度單位和對照水平百分比的相對5’-NTDase活性。APG存在時5’-NTDase的活性為對照水平的16％。
實施例10人免疫系統的活化本實施例顯示APG對在人外周血中循環的免疫系統細胞的體外影響。
人NK-細胞的活化應用三色激光細胞計量術發現作為APG對人NK-細胞影響結果的活化標記。肝素化的血液通過應用“Vacutainer”系統(由BectonDickinson生產)對健康供體的靜脈穿刺獲取。將APG制劑在培養基RPMI-1640中稀釋到1mg/ml的濃度，并通過0.22mcm的濾器過濾而滅菌。在培養基RPMI-1640中制備0.016-100μg/ml APG的因子2系列濃度，并將其以0.2ml的體積置于48-孔Nunc培養平板的孔中。作為負對照，應用0.2ml不含APG的RPMI-1640。將0.2ml肝素化的血液加入到每一個孔中。將樣品于37℃和5％CO2溫育3-48小時。溫育后，將0.05ml血液樣品置于1.2ml的塑料管中。插入了5μl下面的抗體抗-CD16-FITC(Sorbent)、抗-CD69-藻紅素(Pharmingen)、抗-CD3-PerCR(Becton Dickinson)。將管子搖動5秒，然后于室溫暗溫育20分鐘。將1ml裂解-固定溶液(Becton Dickinson)加入到每一個試管中，然后使其在室溫放置15分鐘。將試管在300g離心10分鐘，去除上清液并將細胞沉淀重懸于0.5ml等滲溶液中。
應用激光活化的熒光細胞熒光光度計(cytofluorimeter)(FACSCalibur，由Becton Dickinson生產)和應用Cell Quest軟件顯示不存在APG時僅有7％的NK-細胞表達CD69(一種活化標記)，但如果在細胞培養物中存在10μg/ml APG，那么實際上所有的(96％)NK-細胞均活化并表達CD69。
在APG影響下NK-細胞的溶細胞活性的增加應用Ficoll(Pharmacia)密度梯度離心(室溫30分鐘，300g)從肝素化的血液中獲得了單核級分。將細胞用培養基199洗滌并于2mln/ml懸浮于完全培養基(CM)中，該完全培養基包含RPMI-1640，并補充了10％胎牛血清、20mM Hepes緩沖液(pH7.4)和10μg/ml艮他霉素。將1ml細胞懸浮液置于12-孔Nunc培養平板的每一個孔中，然后將1ml CM(對照)、1ml 20μg/ml的APG溶液或1ml白細胞介素-2(IL-2，20ME/ml，一種標準的NK-細胞活化劑)加入到細胞培養物中。將培養物于37℃在5％CO2的空氣中溫育3小時。溫育后，將細胞收集于離心管中，通過離心(10分鐘，300g)進行沉淀，并以每1mlCM中5mln細胞的濃度重懸。將回收的細胞用作溶細胞效應物。將效應物細胞在CM中連續2-倍稀釋的三份引入(0.1ml體積)到96-孔圓底培養平板的孔中。將10,000個K562細胞系來源的3H-尿苷-標記的目標細胞加入到每一個培養孔中。使效應物和目標細胞的混合物于37℃在5％CO2的空氣中溫育4小時。溫育后，用Titertek Cell Harvester 550將細胞轉移到濾紙上，然后用Wallac 1409meter對放射性水平進行計數。
使效應物細胞在APG存在時溫育3小時后，29％的NK-細胞表達CD69，這意味著該細胞已活化。這種APG-活化的效應物細胞對K562腫瘤目標細胞的溶細胞活性的研究顯示在APG影響下NK-細胞殺傷目標細胞能力的巨大增加。這在低的效應物-目標比例時更明顯，特別是在6.25和12.5的比例時，NK細胞的細胞溶解能力在APG影響下增加3倍。APG在活化NK細胞中比IL-2更有效，不管該活化是根據CD69的表達還是對K562腫瘤細胞的殺傷活性進行估計的。
粒細胞的活化對不同類型細胞上活化標記表達的研究顯示APG誘導粒細胞上CD69的表達。粒細胞的活化在APG存在時體外溫育24小時后明顯。在該時間，60％的粒細胞表達CD69。
實施例11細胞因子合成和分泌的活化本實施例顯示APG活化人血細胞中細胞因子的生產。例如，APG起始了白細胞介素-1β(IL-1β)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)和白細胞介素-8(IL-8)的產生。
肝素化的血液通過應用Vacutainer系統(Becton Dickinson)對健康供體的靜脈穿刺獲取。將APG制劑在培養基RPMI-1640中稀釋到1mg/ml的濃度，并通過0.22μm的濾器過濾而滅菌。在培養基RPMI-1640中制備了0.016-100μg/ml APG的因子2系列濃度，并將其以0.2ml的體積置于48-孔培養平板的孔中。作為負對照，應用0.2ml不含APG的RPMI-1640。然后將0.2ml肝素化的血液加入到每一個孔中。
將樣品于37℃和5％CO2溫育3-48小時。溫育后，將0.2ml培養基收集于0.5ml離心試管中，并于10000rpm離心15分鐘。將上清液于-70℃冷凍并用于確定分泌的細胞因子。將在培養孔中剩余的細胞輕輕用移液管吸取并轉移到1.2ml塑料試管中以用流式細胞儀確定細胞活化標記。培養物上清液中的IL-1β濃度用EIA進行確定。根據生產商的說明書應用Immunotech(法國)生產的IL-1β試劑盒。TNF-α和IL-8分別用購自Innogenetics(比利時)的EIA試劑盒進行測量。顏色強度用由Dynatech(瑞士)制造的自動光度計(450nm)閱讀器進行測量。
應用三色激光活化的流式細胞儀(FACS Callbur，BectonDickinson，美國)在人血液單核細胞中探測了細胞內的細胞因子。將肝素化的血液用RPMI-1640進行1∶1的稀釋，該RPMI-1640含有各種濃度的APG且也含有10μg/ml布雷非爾德菌素A(Sigma，美國)，即一種真核細胞中蛋白質分泌的抑制劑。將樣品于37℃和5％CO2溫育5小時。溫育后，獲取0.1ml懸浮液，并添加1ml裂解-固定溶液(BectonDickinson)。使混合物在室溫放置15分鐘。將試管進行離心(300g，10分鐘)，去除上清液并將細胞沉淀重懸于0.5ml細胞透化混合物中(Becton Dickinson)。將該懸浮液于室溫放置10分鐘。該程序使得細胞內部能夠顯色。在添加了5ml含有0.5％牛血清和0.1％疊氮化鈉的等滲液體后，將細胞通過離心(300g，10分鐘)進行沉淀，并將上清液去除。將5μl抗體添加入細胞沉淀中。為了確定單核細胞中的IL-1β，應用了下面的抗體混合物抗-IL-1β-FITC(Caltag Lab.)、抗-CD14-PE(Caltag Lab.)、抗-CD45-PerCR(Becton Dickinson)。細胞內的確定類似，但在各個標記的抗體混合物中應用FITC-標記的抗-TNF-α。
結果顯示APG刺激TNF-α、IL-1β和IL-8由單核細胞的生產，且該單核細胞是細胞外培養基中這些細胞因子的來源。事實上，如果將布雷非爾德菌素A添加到溫育培養基中且因此阻斷蛋白質分泌，并用流式細胞儀記錄單核細胞內這些細胞因子的累積，那么其在培養基中的濃度就為背景水平。無布雷非爾德菌素A時，單核細胞中細胞因子的累積是不明顯的，這是因為它們不斷輸出到細胞外部，因此培養基中細胞因子的濃度急劇增加，這直接依賴于APG的濃度。劑量依賴性曲線顯示隨APG-濃度在體外從40到400ng/ml的增加，單核細胞的TNF-α、IL-1β和IL-8生產為指數增長。
實施例12干擾素合成的誘導在體外用人細胞系進行了APG的干擾素誘導活性的研究，該人細胞系即L-41(成纖維樣細胞)和J-96(單核細胞樣細胞系)。干擾素誘導的強度通過APG對用腦心肌炎病毒(encephalo-myocarditis virus)(EMV)感染的人細胞系的抗病毒活性進行估計。將每100μl體積20,000個細胞置于96-孔平底培養平板的每一個孔中。將培養基199用于J-96細胞的培養，而使L-41用Eagle’s最小培養基進行生長；兩種培養基均補充了10％胎牛血清、300μg/ml L-谷氨酰胺和100單位/ml的青霉素。
將一種雙鏈微生物DNA制劑，Ridostin(Vector，俄羅斯)用作參考的干擾素誘導劑。將APG和Ridostin的干擾素誘導功效根據其在體外保護L-41和J-96細胞不受EMV的細胞病原性影響的能力進行估計。干擾素誘導能力表示為保護50％的細胞不被病毒致死的化合物的最小有效濃度(CPD50)。
在細胞培養物中將檢驗的制劑的因子2系列稀釋制備為0-100μg/ml的APG或Ridostin終濃度。感染的細胞的生存力和病毒的細胞病原性作用在感染后24小時用光學顯微鏡(Leitz，放大200×)進行計數。在每一種情況下3個實驗結果顯示于表3和4中。
表3用100LD100EMV感染的L-41細胞培養物中APG的干擾素誘導功效
表4用100LD100EMV感染的J-96細胞培養物中APG的干擾素誘導功效
實施例13抗細菌防御的活化應用小鼠的鼠傷寒沙門氏菌(Salmonella typhimurium)的實驗性感染檢驗APG為抗細菌防御的增強劑。該實驗在體重為12-14g的兩種性別的小鼠上進行。在感染前24小時將不同劑量的APG(3.3μg、10μg或30μg)進行皮下注射。用102、103、104或105個微生物細胞(每只小鼠)對小鼠進行腹膜內攻擊。在20日中記錄死亡率。根據動物存活的增加(％)、導致50％死亡的感染劑量(ID50)和攻擊后壽命的延長估計該制劑的保護功效。結果顯示于表5中。
表5APG對小鼠抗鼠傷寒沙門氏菌感染抗性的影響
*-表示ID50及其顯示0.05概率時的界限(括弧中的)。
人們也已發現APG成功地增加了雞對葡萄球菌的抗感染防御。進一步地，應用APG的免疫調節可增加抗細菌化學療法的功效。在用1.5×109金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)攻擊后20分鐘，將一種抗細菌制劑，nifulin以10mg/kg的劑量經口引入雞中。與攻擊的對照組中的40％相比，應用nifulin的治療將雞的存活率增加到70％。APG和nifulin的聯合保護了100％的感染的雞。
實施例14抗病毒防御的活化應用1型單純皰疹病毒(Herpes simplex virus)(HSV-1)感染的實驗模型在白色非近交小鼠中研究了APG的抗病毒作用。結果顯示APG的預防和治療性作用。在攻擊前48小時用每只小鼠3μgAPG的注射或者在攻擊前48和24小時分兩次用每只小鼠3-30μg的注射可保護40-60％的動物不由于感染而死亡。
應用VERO細胞培養物中的HSV-1感染研究了APG增加人細胞對病毒感染抗性的能力。已顯示APG可賦予VERO細胞對HSV-1導致的細胞死亡的防護。
與未處理的VERO細胞相比，在用APG處理的VERO細胞中病毒復制得到急劇抑制。因此，如果在攻擊前24小時用APG對VERO細胞進行預處理，那么HSV-1效價將減少100-1000倍。如果在用HSV-1攻擊VERO細胞后給予該制劑，那么病毒的效價將減少70-100倍。
權利要求
1.一種具有免疫刺激性、抗病毒和/或抗細菌活性的物質，該物質可通過用水從薯蕷科、車前科或茄科搗碎的植物原材料中提取而獲得，且該物質是分子量為1200-40000kD且葡萄糖對糖醛酸的重量比例為1到2-4的水溶性酸性肽聚糖。
2.一種根據權利要求1的物質，其中肽部分構成了酸性肽聚糖總質量的13±3％。
3.一種根據權利要求1或權利要求2的物質，該物質以2.4∶1的比例含有10-15％的棕櫚酸和硬脂酸。
4.一種根據任何前述權利要求的物質，用于治療性用途。
5.一種包含根據任何前述權利要求的物質和藥物可接受的載體的藥物組合物。
6.一種根據權利要求5的組合物，為液體形式。
7.根據權利要求1-4中任何一項的物質用于制備藥物的用途，該藥物用于治療可由增強的抗體合成改善的病癥。
8.根據權利要求1-4中任何一項的物質用于制備藥物的用途，該藥物用于治療可由活化的巨噬細胞改善的病癥。
9.根據權利要求1-4中任何一項的物質用于制備藥物的用途，該藥物用于治療可由活化的單核細胞改善的病癥。
10.根據權利要求1-4中任何一項的物質用于制備藥物的用途，該藥物用于治療可由活化的天然殺傷細胞(NK-細胞)改善的病癥。
11.根據權利要求1-4中任何一項的物質用于制備藥物的用途，該藥物用于治療可由活化的粒細胞改善的病癥。
12.根據權利要求1-4中任何一項的物質用于制備藥物的用途，該藥物用于治療可由活化的細胞因子合成改善的病癥。
13.根據權利要求1-4中任何一項的物質用于制備藥物的用途，該藥物用于治療可由活化的干擾素合成改善的病癥。
全文摘要
一種具有免疫刺激、抗病毒和/或抗細菌活性的物質，該物質可通過用水從薯蕷科(Dioscoreaceae)、車前科(Plantaginaceae)或茄科(Solanaceae)科搗碎的植物原材料中提取而獲得，且該物質是分子量為1200－40000kD且葡萄糖對糖醛酸的重量比例為1到2－4的水溶性酸性肽聚糖。
文檔編號A61P31/12GK1602200SQ02824568
公開日2005年3月30日 申請日期2002年11月15日 優先權日2001年11月16日
發明者A·V·皮楚金, T·M·梅爾尼科娃, R·M·凱托夫, R·I·阿托萊克漢諾夫 申請人:董事研究有限責任合伙公司